Zusammenfassung
Zur Analyse der räumlichen Verteilung von Domänen früh- und spätreplizierender DNA im Zellkern wurde ein Verfahren entwickelt, das Spots in dreidimensionalen lichtoptischen Schnitten unter Berücksichtigung der mikroskopischen Punktbildfunktion segmentiert. Diese Replikationsdomänen besitzen je nach Art der zum Nachweis verwendeten Markierung eine stark unterschiedliche Ausdehnung, die zumeist dem mikroskopischen Auflösungsvolumen nahekommt. Der Intensitätsverlauf von Spots unterschiedlichen Volumens, aber homogener Intensität, wurde sowohl theoretisch als auch durch Erzeugung von Modellbildern und Simulation der mikroskopischen Abbildung berechnet. Die Intensität am Rand eines Spots relativ zur Maximalintensität zeigte dabei eine starke Abhängigkeit vom Spotvolumen, die sich durch eine monoton fallende Intensitäts-Volumen-Funktion beschreiben ließ. Das hier vorgestellte Segmentierungsverfahren findet zunächst Orte lokaler Intensitätsmaxima mit Hilfe eines oktaeder-ähnlichen Top-Hat-Filters. Ausgehend von diesen Orten werden die Spots durch einen iterativen 3D-Wachstumsprozeß segmentiert, wobei nach einem Iterationsschritt jedem Spot über die Intensitäts- Volumen-Funktion ein neuer, individueller Schwellwert zugeordnet wird. Anhand der Modellbilder konnte gezeigt werden, daß das Verfahren eine zuverlässige Bestimmung des Volumens von Spots im Zellkern erlaubt. Die funktionalen Unterschiede zwischen früh- und spätreplizierender DNA spiegelten sich sowohl im unterschiedlichen Volumen als auch in Verteilungsmustern wider.
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Literatur
Aten JA, Bakker PJM, Stap J, Boschman GA and Veenhof CHN (1992): DNA double labelling with IdUrd and CldUrd for spatial and temporal analysis of cell proliferation and DNA replication. Histochemical Journal 24, 251–259
Bradl J, Rinke B, Schneider B, Hausmann M, Cremer C (1995): Improved resolution in „practical“ light microscopy by means of a glass fibre 2π-tilting device. SPIE Proceedings Series 2628: 140–146
Cremer T, Kurz A, Zirbel R, Dietzel S, Rinke B, Schröck E, Speicher MR, Mathieu U, Jauch A, Emmerich P, Scherthan H, Ried T, Cremer C and Lichter P (1993): Role of chromosome territories in the functional compartmentalization of the cell nucleus. Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology, Vol. LVIII, 777–791
Cremer T, Dietzel S, Eils R, Lichter P and Cremer C (1995): Chromosome territories, nuclear matrix filaments and inter-chromatin channels: a topological view on nuclear architecture and function. Proceedings of the Kew Chromosome Conference IV, pp. 63–81. Eds. P.E. Brandham and M. D. Bennett
Eils R, Bertin E, Saracoglu K, Rinke B, Schröck E, Parazza F, Usson Y, Robert-Nicoud M, Stelzer EHK, Chassery JM, Cremer T and Cremer C (1995): Application of confocal laser microscopy and three-dimensional Voronoi diagrams for volume and surface estimates of interphase chromosomes. Journal of Microscopy 177: 150–161
Fox MH, Arndt-Jovin DJ, Jovin TM, Baumann PH and Robert-Nicoud M (1991): Spatial and temporal distribution of DNA replication sites localized by immunofluorescence and confocal microscopy in mouse fibroblasts. Journal of Cell Science 99, 247–253
Hell S, Reiner G, Cremer C and Stelzer EHK (1993): Aberrations in confocal fluorescence microscopy induced by mismatches in refractive index. Journal of Microscopy 169, 391–405
Hiraoka Y, Sedat JW and Agard DA (1990): Determination of three-dimensional imaging properties of a light microscope system. Biophysical Journal 57, 325–333
Holmes TJ, Bhattacharyya S, Cooper JA, Hanzel D, Krishnamurthi V, Lin W-C, Roysam B, Szarowski DH, and Turner JN (1995): Light Microscopic Images Reconstructed by Maximum Likelihood Deconvolution. Handbook of Confocal Microscopy, pp. 389–402. Ed. JB Pawley, Plenum Press, N.Y.
Lima-de-Faria A, Jaworska H (1968): Late DNA synthesis in heterochromatin. Nature 217: 138–142
Manders EMM, Stap J, Brakenhoff GJ, van Driel R and Aten JA (1992): Dynamics of three-dimensional replication patterns during the S phase, analysed by double labelling of DNA and confocal microscopy. Journal of Cell Science 103, 857–862
Manders EMM, Verbeek FJ and Aten JA (1993): Measurement of co-localization of objects in dual-colour confocal images. Journal of Microscopy 169, 375–382
Manders EMM, Hoebe R, Strackee J, Vossepoel AM and Aten JA (1996): Largest Contour Segmentation: A tool for the localization of spots in confocal images. Cytometry 23: 15–21
Russ JC (1995): The Image Processing Handbook. 2nd ed., pp. 249–255. CRC Press Boca Raton Ann Arbor London Tokyo
Samarabandu J, Ma H, Cheng PC and Berezney R (1995): Segmentation and Analysis Algorithms for Processing Multi-dimensional Images of DNA Replication Patterns in the Mammalian Cell Nucleus. Zoological Studies 34, Suppl. 1, 50–52
Shaw PJ and Rawlins DJ (1991): The point-spread function of a confocal microscope: its measurement and use in deconvolution of 3-D data. Journal of Microscopy 163, 151–165
Shaw PJ (1995): Comparison of Wide-Field/Deconvolution and Confocal Microscopy for 3D Imaging. Handbook of Confocal Microscopy, pp. 373–387. Ed. JB Pawley, Plenum Press, N.Y.
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Bornfleth, H., Zink, D., Sätzler, K., Eils, R., Cremer, C. (1996). Modellgestützte Segmentierung von Replikationsdomänen in dreidimensionalen konfokalen Mikroskopiebildern. In: Jähne, B., Geißler, P., Haußecker, H., Hering, F. (eds) Mustererkennung 1996. Informatik aktuell. Springer, Berlin, Heidelberg. https://doi.org/10.1007/978-3-642-80294-2_43
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